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热带海洋学报 >

2021 , Vol. 40 >Issue 6: 128 - 134

DOI: https://doi.org/10.11978/2020136

海洋生物学

黄鳍金枪鱼酶解物免疫活性及其氨基酸分析

  • 巫楚君 , 1 ,
  • 潘剑宇 2 ,
  • 蔡冰娜 2 ,
  • 陶曙红 , 1
展开
  • 1.广东药科大学中药学院, 广东 广州 510006
  • 2.中国科学院南海海洋研究所热带海洋生物资源与生态重点实验室, 广东 广州 510301
陶曙红。email:

巫楚君(1995—), 女, 广东省清远市人, 硕士研究生, 主要从事中药提取分离技术与应用。email:

Copy editor: 林强

收稿日期: 2020-11-18

  修回日期: 2020-12-27

  网络出版日期: 2021-01-04

基金资助

广东省重点领域研发计划(2020B1111030004)

国家重点研发计划项目(2018YFC0311202)

广东省重点领域研发计划资助(2020B1111030004)

广东省自然科学基金(2018A030313088)

广东省自然科学基金(2018A0303130144)

广东省自然科学基金(2018A030313626)

版权

版权所有,未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。
收起

Immunoactivity and Amino Acid Analysis of Enzymatic Hydrolysates of Thunnus albacares

  • WU Chujun , 1 ,
  • PAN Jianyu 2 ,
  • CAI Bingna 2 ,
  • TAO Shuhong , 1
Expand
  • 1. School of Traditional Chinese Medicine, Guangdong Pharmaceutical University, Guangzhou 510006, China
  • 2. Key Laboratory of Tropical Marine Bio-resources and Ecology, South China Sea Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Guangzhou 510301, China
TAO Shuhong. email:

Copy editor: LIN Qiang

Received date: 2020-11-18

  Revised date: 2020-12-27

  Online published: 2021-01-04

Supported by

Research and Development Plans in Key Areas of Guangdong Province(2020B1111030004)

National Key Research and Development Program of China(2018YFC0311202)

Research and Development Plans in Key Areas of Guangdong Province(2020B1111030004)

Natural Science Foundation of Guangdong Province(2018A030313088)

Natural Science Foundation of Guangdong Province(2018A0303130144)

Natural Science Foundation of Guangdong Province(2018A030313626)

Copyright

Copyright reserved © 2021. Office of Acta Agronomica Sinica All articles published represent the opinions of the authors, and do not reflect the official policy of the Chinese Medical Association or the Editorial Board, unless this is clearly specified.
Fold

摘要

本文旨在研究黄鳍金枪鱼(Thunnus albacares)碎肉中4种不同蛋白酶酶解物的3k Da超滤组分对RAW264.7细胞的免疫活性。以RAW264.7细胞为实验模型, 采用噻唑蓝比色法检测细胞增殖活性, 中性红吞噬实验检测细胞吞噬能力, Griess试剂检测细胞培养上清液中NO含量, 并分析酶解物氨基酸组成和分子量分布。实验结果表明, 胰蛋白酶酶解物在12.5~200μg·mL-1范围内无明显细胞毒性, 能增强RAW264.7细胞吞噬能力, 浓度为400μg·mL-1时达到最大值132.50%(P<0.01), 浓度在50~200μg·mL-1范围内能促进巨噬细胞NO释放(P<0.01), 且NO释放量与酶解液浓度存在一定的量效关系; 胰蛋白酶酶解物中必需氨基酸(essential amino acid, EAA)含量最高, 为51.09%, 其碱性氨基酸组氨酸、赖氨酸和精氨酸的含量分别为11.59%、11.00%和6.90%, 均高于其他蛋白酶酶解物, 并且分子量小于1k Da的小肽含量高达97.48%。研究结果表明, 4种蛋白酶酶解物中, 黄鳍金枪鱼碎肉胰蛋白酶酶解物的3k Da组分具有较明显的免疫活性, 这为其作为免疫活性肽的开发利用提供了理论依据。

关键词： 黄鳍金枪鱼; 多肽; 免疫活性; 氨基酸

本文引用格式

巫楚君 , 潘剑宇 , 蔡冰娜 , 陶曙红 . 黄鳍金枪鱼酶解物免疫活性及其氨基酸分析[J]. 热带海洋学报, 2021 , 40(6) : 128 -134 . DOI: 10.11978/2020136

Abstract

In this study, we evaluated the immune activity of ultrafiltration components from yellowfin tuna (Thunnus albacares) meat hydrolyzed by four different proteases on RAW264.7 cells. The RAW264.7 cell line was used as the cell activity screening model in vitro. Methyl thiazolyl tetrazolium (MTT), neutral red and Griess reagent methods were used to detect cell activity, phagocytosis capability and nitric oxide levels in cell culture medium. The amino-acids composition and molecular weight distribution of the hydrolysate were also analyzed. The results show that trypsin hydrolysate had no obvious cytotoxicity in the range of 12.5-200 μg·mL-1 for RAW264.7 cells. It could enhance the phagocytic capacity, and reached the maximum value of 132.50% (P<0.01) at the concentration of 400 μg·mL-1. In the concentration range of 50-200 μg·mL -1, the trypsin hydrolysate could promote nitric oxide release of macrophages (P<0.01), and there was a dose-effect relationship between NO release and the concentration of enzymolysis solution. The content of essential amino acid (EAA, 51.09%) of trypsin hydrolysate was higher than those of the other enzymatic hydrolysates, and the contents of histidine (His, 11.59%), lysine (Lys, 11.00%) and arginine (Arg, 6.90%) were also higher than those of the other enzymatic hydrolysates. The content of small peptides with molecular weight less than 1k Da was as high as 97.48% in trypsin hydrolysate. In the four protease hydrolysates, the 3k Da peptide fraction of trypsin hydrolysate of tuna meat had obvious immune activity, which provides a theoretical basis for its development and utilization as a functional ingredient.

Key words： Thunnus albacares; polypeptide; immunomodulatory activity; amino acid

随着生活节奏加快、饮食习惯不规律、人口老龄化以及各种慢性病发病率的急剧增加, 免疫功能在预防和控制慢性疾病方面变得越来越重要。特别是受新冠疫情影响, 增强机体免疫力已成为国民健康的迫切需求。海洋生物富含优质且活性独特的蛋白肽, 是食源性免疫增强蛋白肽的重要来源。研究发现扇贝多肽能显著对抗地塞米松引起的小鼠脾脏白髓萎缩, 提高小鼠外周血T淋巴细胞数量(张彩梅 等, 2005); 阿拉斯加狭鳕胰蛋白酶蛋白水解物Pro-Thr-Gly-Ala-Asp-Tyr (PTGADY)可增强免疫抑制小鼠的体液、细胞和非特异性免疫(Hou et al, 2016)。食品工业用酶是制备食品用途活性肽的常用工具酶, 其中木瓜蛋白酶和中性蛋白酶的双酶同时水解法也常见于海洋鱼类活性肽的制备(杨萍等, 2009; 纪丽娜, 2012)。
黄鳍金枪鱼(Thunnus albacores)俗称黄鲮甘、鱼串子, 在分类学上隶属于鲈形目金枪鱼科金枪鱼属, 分布于印度洋、太平洋、大西洋热带、亚热带水域, 是金枪鱼属中渔业产量最大的经济鱼种, 2018年我国金枪鱼年捕获量已达到5.5万吨(农业农村部渔业渔政管理局等, 2019)。金枪鱼在加工生产的过程中会产生大量的碎肉、鱼头、内脏等, 这些副产物最高可占原物质的70%(Guerard et al, 2002)。Sutanbawa等(2006)报告称, 金枪鱼罐头行业的废弃物每年估计有45万吨之多, 这些副产物同金枪鱼白肉一样具有优质的蛋白质、小分子肽和功能性氨基酸等活性成分, 表现出多种功能活性。据研究报道, 张朋等(2014)从金枪鱼(鲣鱼)碎肉中获得结构为Phe-Gly- Gly-Val (FGGV)的四肽, 具有良好的血管紧张素转化酶抑制活性; He等(2019)在金枪鱼(鲣鱼)肉中分离所得多肽, 可降低高尿酸血症大鼠血清和肝脏天然黄嘌呤氧化酶活性; 杜帅等(2014)利用金枪鱼碎肉制备高F值寡肽, 高F值寡肽产品具有改善肝性脑病、醒酒、护肝等生理功能; 黄鳍金枪鱼腹部皮肤明胶经碱性蛋白酶解的产物, 具有良好的抗氧化、清除亚硝酸盐和抑制血管紧张素转化酶活性(Han et al, 2015); 内脏经复合蛋白酶水解后的产物经膜超滤得到4个馏分F1、F2、F3、F4, 馏分F4(<3k Da)具有较高的抗氧化和抗菌特性(Pezeshk et al, 2019), 但金枪鱼肽在免疫调节方面的研究鲜有报道。
本文利用小鼠巨噬细胞系RAW264.7细胞模型, 比较了几种常用食品工业用酶水解黄鳍金枪鱼碎肉所获得酶解产物的免疫活性, 以期获得活性较好的免疫活性肽的制备方法, 并通过分析活性肽的氨基酸组成和分子量分布, 为该多肽的进一步研究提供依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 原料与细胞
金枪鱼加工碎肉由广东兴亿海洋生物工程股份有限公司提供, 小鼠巨噬细胞系RAW264.7细胞购自美国ATCC公司。
1.1.2 试剂及仪器
碱性蛋白酶、胰蛋白酶、胃蛋白酶购于南宁庞博生物工程有限公司; 高糖培养基(dulbecco's modified eagle medium, DMEM)、胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)、青/链霉素双抗、磷酸盐缓冲生理盐水(phosphate buffer saline, PBS)购于美国Gibco生物技术有限公司; 脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)、四甲基偶氮噻唑蓝(methyl thiazolyl tetrazolium, MTT)购于美国Sigma化学公司; 一氧化氮检测试剂盒购于碧云天生物技术有限公司; 中性红购于索莱宝生物科技有限公司; 细胞色素C、抑肽酶、杆菌肽、和苯丙氨酸购于上海博升生物科技有限公司; L-氧化型谷胱甘肽购于上海源叶生物科技有限公司; 所用的其他化学品和试剂均为分析级。所用仪器设备包括LA8080氨基酸分析仪(日立, 日本)、1260高效液相色谱(Agilent, 美国)和VIVAFLOW 200超滤膜包(sartorius, 德国)等。

1.2 实验方法

1.2.1 黄鳍金枪鱼碎肉蛋白酶解液及超滤组分的制备
金枪鱼酶解多肽的制备: 金枪鱼碎肉, 用匀浆机搅成肉糜, 按照表1条件加入蒸馏水, 搅拌3次, 分别用1mol·L-1的HCl溶液和NaOH溶液调节pH, 在水解温度下预热20min后加入蛋白酶水解相应的时间。水解后100℃沸水浴10min, 10000r·min-1, 4℃离心30min, 取上清液用0.2μm滤膜抽滤, 滤过液用10k和3k MWCO超滤膜处理, 取<3k Da滤过液浓缩, 冷冻干燥后获得胃蛋白酶水解金枪鱼多肽(tuna protein hydrolysated by pepsin, TPP)、胰蛋白酶水解金枪鱼多肽(tuna protein hydrolysated by trypsin, TPT)和碱性蛋白酶水解金枪鱼多肽(tuna protein hydrolysated by alcalase, TPA)。
表1 金枪鱼肉酶解条件

Tab. 1 Enzymolysis conditions of tuna meat

样品组别 酶种类 料液比(V/V) pH 水解温度/℃ 酶量/( U·g-1) 水解时长/h
TPP 胃蛋白酶 1:3 2.0 37 2500 6
TPT 胰蛋白酶 8.0 37 3000 6
TPA 碱性蛋白酶 8.0 50 3000 4
TPPT 胃蛋白酶、胰蛋白酶 2.0、8.0 37 2500、3000 2、4
复合蛋白酶酶解多肽(tuna protein hydrolysated by pepsin and trypsin, TPPT)的制备: 取金枪鱼糜300g, 加入3倍水体积蒸馏水, 搅拌3次, 用1mol·L-1 HCl调pH至2.0, 37℃水浴预热20min后加入2500U·g-1胃蛋白酶, 37℃酶解2h后, 加入1mol·L-1 NaOH溶液调pH至8.0, 加入3000U·g-1胰蛋白酶, 37 ℃酶解4h后, 后续灭活、离心、抽滤、浓缩、冷冻干燥操作同上, 获得TPPT。
1.2.2 细胞培养
RAW264.7细胞培养于含有10% FBS、1%青霉素(10000U·mL-1)和链霉素(10000μg·mL-1)的DMEM培养基中(V/V), 在37 ℃, 5% CO2孵箱中培养, 收集对数期RAW264.7细胞用于免疫活性研究。
1.2.3 酶解物对RAW264.7细胞增殖的影响
将 RAW264. 7细胞以5 × 105cells·mL-1, 每孔100μL接种于96孔细胞培养板中, 培养24h后弃去上清液, 分别加入含终浓度为12.5、25、50、100、200、400及800μg·mL-1样品溶液, 每孔200μL, 空白对照组为含10% FBS的DMEM培养基, 每组设6复孔, 在37℃、5%CO2条件下培养24h后, 于结束前4h每孔加入5mg·mL-1的MTT, 每孔20μL, 4h弃上清液, 加入DMSO 150μL, 振荡10min, 置于酶标仪570nm处测定OD值, 并按公式(1)计算细胞增殖率Cr。
${{C}_{\text{r}}}={{{A}_{1}}}/{{{A}_{0}}\times 100 \%}\;$
式中A1、A0分别为样品的吸光度和空白对照的吸光度。
1.2.4 酶解物对RAW264.7细胞吞噬能力的影响
将 RAW264. 7细胞以5×105cells·mL-1, 每孔100μL接种于96孔细胞培养板中, 培养24h后弃去上清液, 分别加入含终浓度为12.5、25、50、100、200、400及800μg·mL-1样品溶液, 每孔200μL, 空白对照组为含10% FBS的DMEM培养基, 每组设6复孔, 在37℃、5%CO2条件下培养24h后, 弃去上清液, 每孔加入100μL 0.1%中性红溶液, 在培养箱中继续孵育1h后吸出中性红溶液, 用PBS洗3次, 向各孔加入100μL细胞裂解液(乙酸: 无水乙醇=1:1, V/V), 室温放置2h, 置于酶标仪540 nm处测定OD值, 并按公式(2)计算吞噬率Cp。
${{C}_{\text{p}}}={{{A}_{1}}}/{{{A}_{0}}\times 100 \%}\;$
式中A1、A0分别为样品的吸光度和空白对照的吸光度。
1.2.5 酶解物对RAW264.7细胞NO释放量的影响
将RAW264. 7细胞以5×105cells·mL-1, 每孔100μL接种于96孔细胞培养板中, 培养24h后弃去上清液, 分别加入含终浓度为50、100及200μg·mL-1样品溶液, 每孔200μL, 空白对照组为含10% FBS的DMEM培养基, 每组设4复孔, 在37℃、5%CO2条件下培养24h后, 收集各孔中的细胞培养上清, 用NO检测试剂盒检测上清中的NO含量, 操作按说明书进行, 置于酶标仪570nm处测定OD值, 并按公式(3)计算NO的增加量INO。
${{I}_{\text{NO}}}={\left( {{A}_{1}}-{{A}_{0}} \right)}/{{{A}_{0}}\times 100 \%}\;$
A1、A0分别为样品的吸光度和空白对照的吸光度。
1.2.6 氨基酸组分分析
酸水解: 准确称取样品放入水解管中, 加入6mol HCl, 封管, 于110℃水解22h, 冷却, 定容, 过滤, 蒸发去过量盐酸, 用柠檬酸钠缓冲液溶解, 采用LA8080氨基酸分析仪(日立, 日本)分析。分析条件: 磺酸型阳离子树脂2.6mm×150mm; 检测波长570nm和440nm。
碱水解测色氨酸: 准确称取样品放入水解管中, 加入4mol·L-1的LiOH碱水解剂1.5mL, 连接活塞排抽真空约10~15min, 立即封口, 于110℃水解20h, 水解管冷却后切开管口, 用柠檬酸钠缓冲液将水解定量转移到25mL容量瓶中, 再加入6mol·L-1HCl中和, 并用柠檬酸缓冲液定容, 用0.45μm滤膜过滤取上清液, 采用1100高效液相仪(安捷伦, 美国)分析, 色谱柱: MN-C18, 流动相: 0.0085mol·L-1乙酸钠缓冲液和甲醇(95:5), 流速1.5mL·min-1, 波长280nm, 进样量15μL。
氨基酸组成比较采用Heml 1.0.3.7进行层次聚类分析。
1.2.7 分子量分布分析
采用凝胶排阻色谱进行分子量的测定。取3mg·mL-1的样品溶液, 用0.22μm的滤膜过滤后进色谱柱TSK gel G2000SWXL(300mm×7.8mm)。用乙腈/水/三氟乙酸(20/80/0.1, V/V/V)作流动相, 检测波长220nm, 流速0.5mL·min-1, 柱温35℃, 进样量5μL。用细胞色素C(M:12355), 抑肽酶(M:6511), 杆菌肽(M:1422), L-氧化型谷胱甘肽(M:612.63)和苯丙氨酸(M:165.2)作为相对分子质量校正标准。以标准品的logMw及洗脱时间作标准曲线(y = -0.0169x2+ 0.3475x+2.3846, R2=0.9986)。
1.2.8 数据处理
实验采用SPSS 25.0软件进行单因素方差分析和处理, P<0.05表示数据具有显著性差异, P<0.01表示数据具有极显著性差异。

2 结果和分析

2.1 酶解物对RAW264.7细胞体外活性筛选

2.1.1 酶解物对RAW264.7细胞增殖活性的影响
MTT比色法常用以反映活细胞数量及细胞活力, 广泛用于免疫学相关实验(白生宾 等, 2011)。结果如图1所示, 不同浓度的TPPT、TPP、TPA和TPT
图1 不同浓度金枪鱼肉酶解物对RAW264.7细胞增殖活性影响

与空白组对比, *表示P<0.05, **表示P<0.01

Fig. 1 Effects of different concentrations of tuna enzymatic hydrolysates on RAW264.7 cell proliferation activity

对RAW264.7细胞作用24h后, 随着浓度的增加, 细胞的增殖率出现先平缓后下降的趋势。当样品浓度在12.5~200μg·mL-1较低范围内时, 金枪鱼肉酶解物对RAW264.7细胞的增殖率影响不显著, 没有明显的细胞毒性作用。浓度大于400μg·mL-1时, 对RAW264.7细胞产生抑制作用, 与空白对照相比有极显著性差异(P<0.01)。
2.1.2 酶解物对RAW264.7细胞吞噬能力的影响
巨噬细胞在脊椎动物体内参与先天性免疫和细胞免疫, 是重要的免疫细胞, 其激活与否是检测候选活性物免疫活性的重要标志之一(Lin et al, 2017)。本文采用中性红法检测各组RAW264.7细胞吞噬功能的变化, 结果如图2所示, 在12.5~400μg·mL-1范围内, 随着浓度的增加, TPPT、TPP和TPT的吞噬率呈上升趋势; 在浓度为400μg·mL-1时达到最大, TPPT、TPP和TPT的吞噬率分别为131.25%、122.88%和132.50% (P<0.01); 当浓度大于400μg·mL-1时, 吞噬率出现下降趋势。而TPA的吞噬能力无明显变化, 与空白组相比无显著差异。
图2 不同浓度金枪鱼肉酶解物对RAW264.7细胞吞噬能力影响

与空白组对比, *表示P<0.05, **表示P<0.01

Fig. 2 Effects of different concentrations of enzymatic hydrolysates on the phagocytosis of RAW264.7 cells

2.1.3 酶解物对RAW264.7细胞NO释放量的影响
NO是介导炎症反应的关键因子, 也是参与免疫反应的重要免疫因子, 在内毒素致机体损伤中起重要作用(Yang et al, 2002)。在免疫应答初期, 巨噬细胞在免疫活性物质的作用下, 会活化并释放适量NO等免疫因子, 进而参与免疫反应, 适量的NO可以直接杀死病原体、降低病原体复制功能, 同时还能抑制肿瘤细胞生长甚至可以杀伤肿瘤细胞。本文采用Griess试剂检测细胞培养上清液中NO含量。结果如图3所示, 与空白对照组相比, 不同浓度TPT均可极显著促进RAW264.7细胞生成NO(P<0. 01), 且NO释放量与酶解液浓度存在一定的量效关系, 在浓度为200μg·mL-1时, NO产量增加量高达286.33%, 而其他酶解物与空白对照组相比无显著性差异。
图3 不同浓度金枪鱼肉酶解物对RAW264.7细胞释放NO的影响

与空白组对比, *表示P<0.05, **表示P<0.01

Fig. 3 Effects of different concentrations of tuna enzymatic hydrolysates on the release of NO in RAW264.7 cells

2.2 酶解物氨基酸组分分析

氨基酸是人体免疫系统的基本物质, 与免疫系统的组织、器官发育密切相关, 进入体内后被重新分配, 参与炎症和免疫反应。4种酶解物中氨基酸组成的聚类分析见图4, 4种金枪鱼碎肉酶解物氨基酸含量丰富, 必需氨基酸含量高达47.89%, 其中TPT的必需氨基酸含量最高, 占该组分氨基酸总量的51.09%。如图4所示, TPP和TPA的水解产物形成了两个非常紧密的簇。TPPT水解物的氨基酸组成也与TPP和TPA的水解物有一些相似之处, 但落在更宽的距离上; TPT水解物与其他水解物距离最宽, 说明酶解物TPP和TPA的氨基酸组成较为接近; 而TPT与其他3个酶解物的氨基酸组成有着较大差距, 其中由图4和表2可知, TPT的组氨酸、赖氨酸和精氨酸等3个碱性氨基酸的相对含量较高, 分别为11.59%、11.00%和6.90%, 均高于其他酶解物。
图4 样品氨基酸组成层次聚类分析图

Fig. 4 Cluster analysis diagram of amino acid composition hierarchy of samples

表2 酶解样品氨基酸组成

Tab. 2 Amino acid composition of enzymolysis sample

样品 氨基酸组成/%
Asp Thr Ser Glu Gly Ala Val Met Ile Leu Tyr Phe Lys His Arg Pro Trp EAA
TPA 9.49 4.84 4.16 14.09 5.08 6.47 5.01 3.14 4.21 8.11 3.66 3.85 9.39 8.43 5.97 3.19 0.92 47.89
TPP 9.95 4.81 4.08 13.61 4.49 6.03 5.35 3.49 4.69 8.68 4.22 4.63 6.85 9.95 5.25 2.81 1.12 49.56
TPPT 9.59 4.94 4.24 13.23 4.99 6.45 5.48 3.09 4.69 8.49 1.90 4.52 9.58 7.90 6.23 3.40 1.27 49.95
TPT 8.57 4.58 3.27 12.03 4.70 6.41 4.73 2.91 3.74 7.47 3.88 4.05 11.00 11.59 6.90 3.14 1.02 51.09

2.3 酶解物分子量分布

酶解物的分子量分布如表3所示, TPP和TPT相比, 都是特异性酶切位点, 且都含有小分子肽, 但胰蛋白酶的酶切位点比胃蛋白酶更为严格, 且TPT的活性更好; TPT与TPA相比, 分子量分布相近, 但碱性蛋白酶是非特异性酶, 胰蛋白酶为特异性蛋白酶, 水解Lys和Arg形成肽键, 因此经胰蛋白酶酶解后的肽链末端氨基酸大多以Lys和Arg存在, 综合提示活性与酶切位点有关; TPPT与TPT相比, 小于0.5k Da的组分含量高达88.08%, TPPT为复合酶酶解产物, 可能更多的释放出游离氨基酸, 使其活性弱于TPT, 提示TPPT会破坏相关活性序列特征。
表3 酶解物不同分子量范围所占峰面积百分比

Tab. 3 Percentage of peak area of enzymatic hydrolysates with different molecular weight ranges

样品组别 各组分占峰面积比值/%
2~3k Da 1~2k Da 0.5~1k Da <0.5k Da
TPP 2.66 22.77 28.50 46.08
TPT 0.00 2.53 24.24 73.24
TPA 0.00 4.23 36.39 59.39
TPPT 0.00 0.00 11.92 88.08

3 讨论

机体遭遇外来异物攻击时, 会激活巨噬细胞的吞噬作用, 而免疫活性肽具有增强巨噬细胞吞噬作用, 促进巨噬细胞释放NO等功能。巨噬细胞的增殖能力、吞噬能力、NO释放能力等是评价其是否被激活的常用指标。本实验检测金枪鱼肉不同蛋白酶酶解物对RAW264.7细胞的免疫活性, 研究显示, 不同浓度胰蛋白酶酶解产物TPT作用于RAW264.7细胞24h后, 均可增强其吞噬作用, 促进其NO释放, 显示胰蛋白酶酶解产物具有明显的免疫活性。这一结果与Hou等(2012, 2016)用胰蛋白酶酶解鳕鱼的研究相似。TPT表现出对RAW264.7细胞显著的NO释放提升作用, 可能与其能诱导细胞中iNOS的表达有关(Lind et al, 2017)。
氨基酸在人类免疫系统中发挥着各种作用, 苏氨酸在免疫球蛋白中含量丰富, 在维持肠道固有免疫屏障完整性方面起重要作用; 缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸属支链氨基酸, 支链氨基酸能促进Th1型免疫反应的进行; 色氨酸在血浆和组织中浓度较低, 但其产生的中间代谢物会生成自由基清除剂和抗氧化剂, 从而参与机体免疫反应; 组氨酸经催化生成的组氨在炎症和过敏反应中扮演重要角色(王晓芳 等, 2013), 这些氨基酸都属于必需氨基酸(EAA), 与其他酶解物相比, TPT中EAA含量最高; 此外, 赖氨酸能将抗原和T细胞连接在一起, 使T细胞产生针对抗原的特异效应, 具有增强人体免疫的功能(Ghosh et al, 2008); 精氨酸可减少手术后内毒素和应激反应的发生(Hou et al,2012), 可增加肝脏中精氨酸酶的活性, 有助于将血液中的氨转化为尿素排出去, 提高机体免疫功能(Mizock, 2010; 张爱琳 等, 2016)。Hou等(2012)研究发现阿拉斯加狭鳕骨胰蛋白酶酶解物具有较高的免疫调节活性, 这可能因为其富含苏氨酸、谷氨酸、精氨酸和半胱氨酸这些与免疫调节活性有关的氨基酸。这提示酶解物的氨基酸组成与免疫调节活性有较大关联, TPT除了含有上述具有免疫调节活性的EAA, 还富含赖氨酸和精氨酸, 因胰蛋白酶专属水解赖氨酸和精氨酸所形成的肽键。因此, TPT所具有的免疫活性可能与胰蛋白酶酶解物的氨基酸组成有关。
叶盛旺等(2019)研究发现青蛤多肽高免疫活性组分的分子量小于3kDa; 杨萍等(2010)研究发现黄鳍金枪鱼鱼头酶解物小于1k Da组分单独作用能明显促进淋巴细胞增殖。由分子量分布结果可以看出, TPT分子量小于1k Da的含量高达97.48%, 由此推测TPT酶解物3k Da超滤组分具有较高的免疫活性可能与其小肽序列的必需氨基酸和碱性氨基酸组成和结构有关。
综上所述, 胰蛋白酶酶解黄鳍金枪鱼肉得到的小于3k Da超滤组分, 值得深入分析结构组成与研究其作用机制, 为进一步开发具有增强免疫力功效的金枪鱼肽食品提供理论依据及参考。

参考文献

原文顺序 | 文献年度倒序 | 文中引用次数倒序
[1]
白生宾, 陈红香, 钟近洁, 等, 2011. MTT法检测RAW264.7细胞活力及可能因素分析[J]. 中国现代医学杂志, 21(23):2831-2833.

BAI SHENGBIN, CHEN HONGXIANG, ZHONG JINJIE, et al, 2011. RAW264.7 cell viability via MTT assay and possible factor analysis[J]. China Journal of Modern Medicine, 21(23):2831-2833 (in Chinese with English abstract).

[2]
杜帅, 宋茹, 罗红宇, 2014. 水解金枪鱼碎肉制备高F值寡肽[J]. 中国食品学报, 14(10):124-133.

DU SHUAI, SONG RU, LUO HONGYU, 2014. High fischer ratio oligo-peptide from hydrolysates of tuna meat[J]. Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology, 14(10):124-133 (in Chinese with English abstract).

[3]
纪丽娜, 2012. 金枪鱼头酶解物免疫活性肽的分离及对小鼠腹腔巨噬细胞功能的影响[D]. 湛江: 广东海洋大学: 9-10.

JI LINA, 2012. Studies on separation of immune activity from tuna head hydrolysates and its effect on mouse peritoneal macrophages[D]. Zhanjiang: Guangdong Ocean University: 9-10 (in Chinese with English abstract).

[4]
农业农村部渔业渔政管理局, 全国水产技术推广总站, 中国水产学会, 2019. 中国渔业统计年鉴[M]. 北京: 中国农业出版社: 38-40(in Chinese).

[5]
王晓芳, 陈同辛, 2013. 氨基酸与免疫功能的关系[J]. 国际儿科学杂志, 40(1):28-31.

WANG XIAOFANG, CHEN TONGXIN, 2013. Amino acids and immune functions[J]. International Journal of Pediatrics, 40(1):28-31 (in Chinese with English abstract).

[6]
杨萍, 蔡本利, 洪鹏志, 等, 2009. 黄鳍金枪鱼头蛋白酶解液及其分级组分对小鼠免疫功能的影响[J]. 食品与生物技术学报, 28(1):131-135.

YANG PING, CAI BENLI, HONG PENGZHI, et al, 2009. Effect of tuna head enzymatic hydrolysate and its portions on inmmune function in mice[J]. Journal of Food Science and Biotechnology, 28(1):131-135 (in Chinese with English abstract).

[7]
杨萍, 蔡本利, 洪鹏志, 2010. 黄鳍金枪鱼头蛋白酶解液及分级组分对小鼠脾淋巴细胞增殖的影响[J]. 天然产物研究与开发, 22(3):498-501.

YANG PING, CAI BENLI, HONG PENGZHI, 2010. Effect of tuna head enzymatic hydrolysate and its portions on mouse spleen lymphocyte proliferation[J]. Natural Product Research and Development, 22(3):498-501 (in Chinese with English abstract).

[8]
叶盛旺, 杨最素, 李维, 等, 2019. 青蛤酶解多肽对RAW264.7巨噬细胞的免疫调节作用[J]. 食品科学, 40(7):185-191.

YE SHENGWANG, YANG ZUISU, LI WEI, et al, 2019. Immunomodulatory effects of peptides from enzymatic hydrolysate of Cyclina sinensis on RAW264.7 macrophages[J]. Food Science, 40(7):185-191 (in Chinese with English abstract).

[9]
张爱琳, 段筱筠, 任斐, 等, 2016. 牛乳中主要过敏原的分离及其氨基酸成分分析[J]. 中国乳品工业, 44(12):4-6, 10.

ZHANG AILIN, DUAN XIAOJUN, REN FEI, et al, 2016. Study the separation on the main allergens in milk and its amino acid composition analysis[J]. China Dairy Industry, 44(12):4-6, 10 (in Chinese with English abstract).

[10]
张彩梅, 张红梅, 于业军, 等, 2005. 扇贝多肽对小鼠免疫功能调节的研究[J]. 中国海洋药物, 24(3):18-21.

ZHANG CAIMEI, ZHANG HONGMEI, YU YEJUN, et al, 2005. Immunomodulation of polypeptides from Chlamys farreri (PCF) in mice[J]. Chinese Journal of Marine Drugs, 2005, 24(3):18-21 (in Chinese with English abstract).

[11]
张朋, 贺卯苏, 迟长凤, 等, 2014. 金枪鱼(Katsuwonus pelamis)碎肉蛋白降压肽的酶解制备及活性研究[J]. 海洋与湖沼, 45(5):1092-1098.

ZHANG PENG, HE MAOSU, CHI CHANGFENG, et al, 2014. Preparation and characterisation of an antihypertensive peptide from protein hydrolysate of askipjack tuna (Katsuwonus pelamis) ground meat[J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 45(5):1092-1098 (in Chinese with English abstract).

[12]
GHOSH S, PELLETT P L, AW-HASSAN A, et al, 2008. Impact of lysine-fortified wheat flour on morbidity and immunologic variables among members of rural families in northwest Syria[J]. Food and Nutrition Bulletin, 29(3):163-171.

DOI

[13]
GUERARD F, GUIMAS L, BINET A, 2002. Production of tuna waste hydrolysates by a commercial neutral protease preparation[J]. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 19- 20:489-498.

[14]
HAN YUNA, BYUN S H, PARK J H, et al, 2015. Bioactive properties of enzymatic hydrolysates from abdominal skin gelatin of yellowfin tuna (Thunnus albacares)[J]. International Journal of Food Science and Technology, 50(9):1996-2003.

DOI

[15]
HE WEIWEI, SU GUOWAN, SUN-WATERHOUSE D, et al, 2019. In vivo anti-hyperuricemic and xanthine oxidase inhibitory properties of tuna protein hydrolysates and its isolated fractions[J]. Food Chemistry, 272:453-461.

DOI

[16]
HOU HU, FAN YAN, LI BAFANG, et al, 2012. Preparation of immunomodulatory hydrolysates from Alaska pollock frame[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 92(15):3029-3038.

DOI

[17]
HOU HU, FAN YAN, WANG SHIKAI, et al, 2016. Immunomodulatory activity of Alaska pollock hydrolysates obtained by glutamic acid biosensor- Artificial neural network and the identification of its active central fragment[J]. Journal of Functional Foods, 24:37-47.

DOI

[18]
LIN HUIWEN, LIU CHENGWEI, YANG D J, et al, 2017. Dunaliella salina alga extract inhibits the production of interleukin-6, nitric oxide, and reactive oxygen species by regulating nuclear factor-κB/Janus kinase/signal transducer and activator of transcription in virus-infected RAW264.7 cells[J]. Journal of Food and Drug Analysis, 25(4):908-918.

DOI

[19]
LIND M, HAYES A, CAPMDA M, et al, 2017. Inducible nitric oxide synthase: Good or bad?[J]. Biomedicine & Pharmacotherapy, 93:370-375.

DOI

[20]
MIZOCK B A, 2010. Immunonutrition and critical illness: an update[J]. Nutrition, 26(7-8):701-707.

DOI

[21]
PEZESHK S, OJAGH S M, REZAEI M, et al, 2019. Fractionation of protein hydrolysates of fish waste using membrane ultrafiltration: Investigation of antibacterial and antioxidant activities[J]. Probiotics and Antimicrobial Proteins, 11(3):1015-1022.

DOI

[22]
SUTANBAWA Y, AKNES A, 2006. Tuna process waste an unexploited resource[J]. Infofish International, 3:37-40.

[23]
YANG FAN, COMTOIS A S, FANG LIWEI, et al, 2002. Nitric oxide-derived nitrate anion contributes to endotoxic shock and multiple organ injury/dysfunction[J]. Critical Care Medicine, 30(3):650-657.

DOI

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