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Journal of Tropical Oceanography >

2025 , Vol. 44 >Issue 3: 121 - 129

DOI: https://doi.org/10.11978/2024136

Marine Biology

Effects of environmental factors on larval settlement and metamorphosis of the fouling organism Mytilopsis sallei

  • DAI Li , 1 ,
  • PAN Huakang 2 ,
  • LIU Liyang 2 ,
  • HE Jian 2 ,
  • ZHAO Ke 3 ,
  • QI Jianfei 4 ,
  • ZHANG Zhen 1 ,
  • SU Pei , 2 ,
  • FENG Danqing 2
Expand
  • 1. China Nuclear Power Engineering Co., Ltd., Beijing 100840, China
  • 2. College of Ocean and Earth Sciences, Xiamen University, Xiamen 361102, China
  • 3. Hainan Nuclear Power Co., Ltd., Changjiang 572733, China
  • 4. Fisheries Research Institute of Fujian, Xiamen 361000, China
SU Pei. email:

Copy editor: LIN Qiang

Received date: 2024-06-13

  Revised date: 2024-07-23

  Online published: 2024-09-12

Supported by

National Key Research and Development Program of China(2022YFC3106004)

High-quality Development of Marine and Fishery industry Project of Fujian(FJHYF-L-2023-14)

Ocean Service and High-quality Development of Fishery Project of Fujian(FJHY-YYKJ-2023-1-5)

The Project from China Nuclear Power Engineering Co., Ltd.(20223160A0857)

Fold

Abstract

The false mussel Mytilopsis sallei is an important invasive fouling organism in the south of China, which often attaches to aquaculture facilities and causes fishery losses. In this study, the ecological single-factor gradient test was used to test larval settlement and metamorphosis of M. sallei under different salinities, water temperatures, light intensities and dissolved oxygen concentrations. The results showed that M. sallei larvae could settle and metamorphose at temperatures between 25℃~35℃. Low temperatures (10℃ and 15℃) significantly inhibited larval settlement and metamorphosis, while high temperature (40℃) caused the death of larvae. M. sallei larvae could settle and metamorphose under a wide salinity range (15‰~30‰), with the optimal salinity of 15‰. The suitable light intensity was 0’5000 lx, but when light intensity was higher than 10000 lx, larval settlement and metamorphosis were significantly inhibited. M. sallei larvae had a strong resistance capacity to low dissolved oxygen concentration. The suitable dissolved oxygen concentration for its settlement and metamorphosis was 40%’100% of saturated oxygen concentration (3.2’8.0 mg·L-1), but when the dissolved oxygen concentration was lower than 20% (1.6 mg·L-1), larval settlement and metamorphosis were inhibited. This study revealed the suitable environmental conditions on larval settlement and metamorphosis of M. sallei, which is important for predicting its possible distribution in the coastal areas of China and preventing its invasion to other areas of China to cause aquaculture industry losses.

Key words： Mytilopsis sallei; marine fouling organism; invasive species; environmental factors; settlement and metamorphosis

Cite this article

DAI Li , PAN Huakang , LIU Liyang , HE Jian , ZHAO Ke , QI Jianfei , ZHANG Zhen , SU Pei , FENG Danqing . Effects of environmental factors on larval settlement and metamorphosis of the fouling organism Mytilopsis sallei[J]. Journal of Tropical Oceanography, 2025 , 44(3) : 121 -129 . DOI: 10.11978/2024136

沙筛贝(Mytilopsis sallei), 又称萨氏仿贻贝, 原产于中美洲热带海域, 随着全球航运的发展, 其通过附着在船体或其幼体由压舱水携带至太平洋和印度洋沿岸(He et al, 2016; Pyšek et al, 2020)。1990年首次报道出现在中国大陆地区(王建军 等, 1999), 目前在海南、广西、广东及福建均有分布, 已成为我国南方海区重要的外来入侵生物(张悦 等, 2024)。沙筛贝繁殖率高, 生长发育快, 能在内湾或浅水水域大量繁殖。据Muhtadi等(2024)调查报道, 在印度尼西亚的沿海湖泊中, 沙筛贝呈高密度分布, 最高附着密度达到24100ind.·m-2。沙筛贝的高附着密度, 会争夺其他生物的生存空间, 加速环境氧耗并形成单一优势群落, 致使当地生物多样性下降, 损害原有生态系统(Cai et al, 2014)。蔡立哲 等(2006)在2003—2004年期间调查发现, 沙筛贝在福建厦门海域具有较高的附着密度, 可达50878.0ind.·m-2。沙筛贝是典型的海洋污损生物, 在所处海域的网箱、浮球、缆绳等人工设施上均能附着, 并形成极高的附着密度, 严重影响所在海域养殖生物的存活率, 不仅对当地的生态系统造成严重影响, 同时也对水产养殖业造成巨大破坏(张悦 等, 2024)。福建厦门养殖海域曾因沙筛贝入侵导致所养殖的牡蛎等贝类大幅减产, 而沙筛贝本身不具食用价值, 因此造成了严重的经济损失(王建军 等, 1999)。本研究团队对福建东山八尺门海域的调查也发现牡蛎养殖吊绳上附着大量沙筛贝, 争夺牡蛎的生存空间, 造成其大量死亡, 同时也严重堵塞附近海域的养殖网箱, 危害养殖活动。
海洋底栖无脊椎动物幼体的附着变态在其生活史中至关重要。研究表明, 多种环境因子(温度、盐度、光照强度等) 可直接影响海洋底栖生物幼体的附着和变态过程。Nozawa等(2007)的研究表明, 热带石珊瑚Favites chinensis的幼体在高温(34℃)条件下的附着率显著高于27℃和31℃, 而亚热带种Acropora solitarvensis的幼体在实验初期(1d), 29℃下附着率显著高于其他温度组(20~26℃), 但5d后29℃实验组的死亡率显著升高, 其最适附着温度为26℃。Rao等(2020)发现, 在18~36℃下, 藤壶Capitulum mitella的幼体能够存活且变态, 最适变态温度为21~33℃, 低温(7℃)则抑制其变态。此外, 低盐度(15mg·L-1)能抑制幼体变态, 最适变态盐度为25~35mg·L-1。Nada等(2020)的研究发现, 海绵Haliclona amboinensis的幼体更趋向于在自然光照条件下附着变态, 而黑暗下, 幼体只在水面处变态但不附着。目前针对沙筛贝的研究主要集中在形态、分布、分类、幼体发育及生理生态学等方面(He et al, 2016; 马鸿梅 等, 2020), 尚未有其幼体附着变态和环境因子间关系的报道, 而幼体的附着变态直接影响种群分布。当前, 对于沙筛贝的防治主要是对其可能的传播途径进行防控, 比如对船舶压载水的处理(Lim et al, 2020)。而随着全球气候变化, 可能导致本土已有的入侵种继续扩张至其他适宜的生长海域(Dong et al, 2023)。因此, 研究沙筛贝幼体附着变态和环境因子间关系对于预测其入侵及其防治具有重要意义。
本文开展了几种主要的环境因子对沙筛贝幼体附着变态影响的研究。采用单因子控制试验方法, 检测了不同环境因子(温度、盐度、光照强度和溶解氧)对沙筛贝幼体附着变态的影响, 明确了沙筛贝幼体附着变态的适宜环境因子范围, 并结合沙筛贝分布的自然生境进行分析。为进一步了解入侵物种沙筛贝的生存环境、评估其入侵风险以及开展生态防治提供重要的参考资料。

1 材料和方法

1.1 材料

沙筛贝成体采自厦门马銮湾牡蛎养殖缆绳上, 运送至实验室后过夜阴干, 然后放入海水中升温刺激获得受精卵, 在过滤(滤膜孔径为0.22μm)后的自然海水(盐度28‰, 水温26~28℃)中黑暗下曝气培养至足面盘幼体。

1.2 方法

1.2.1 环境因子设计

沙筛贝幼体附着变态实验在六孔板中进行, 主要环境因子为温度25℃、盐度20‰、溶解氧饱和百分率S>80%, 光照0lx, 采取单因子梯度设计, 在控制某个环境因子变动时, 其余因子不变, 具体如下。
温度: 分别设置10、15、20、25、30、35、40℃温度梯度, 在生化培养箱(5400, 美国NAPCO公司)中进行温度控制。
盐度: 分别设置0‰、5‰、10‰、15‰、20‰、25‰、30‰、35‰、40‰、45‰、50‰盐度梯度; 分别利用精制海盐、超纯水与自然海水调制高、低盐度海水, 以折光式海水盐度计(S-28E, 日本ATAGO公司)测定盐度值。
光照: 在光照培养箱(SPX-GBH, 上海跃进医疗器械有限公司)中进行培养, 控制光照强度, 以光度计(TES1339, 上海宇标电子科技有限公司)测定光照强度。调节光照强度为0、500、1000、2000、5000、10000、20000lx, 光照周期分别为12L∶12D和24L∶0D。
溶解氧: 设计可调节氧气浓度的封闭容器(Hassell et al, 2009)(图1)。往海水中通入氮气, 制备不同氧气饱和度 (饱和百分率S=5%、10%、20%、40%、60%、80%、100%)的实验用水, 实验用六孔板放置在容器中, 通过进气阀通入氮气, 在出气端利用便携式氧气检测仪(JSA8, 深圳吉顺安科技有限公司)检测氧含量, 当氧含量与实验用水的溶解氧一致时, 停止充气, 关闭阀门, 开始实验。实验过程中, 分别在24h、48h和72h时, 利用溶解氧测定仪(JSA6-02101SR, 长春小天鹅仪器有限公司)检测水体中的氧含量。
图1 溶解氧浓度调节装置示意图

Fig. 1 Line drawing of the dissolved oxygen concentration regulation device

1.2.2 沙筛贝幼体附着变态实验

在系列环境因子梯度实验中, 将20~30只沙筛贝足面盘幼体和10mL过滤海水加入到六孔板中, 每个实验组设置3个平行, 利用倒置显微镜在实验24h、48h和72h时, 观察并记录幼体的附着、变态和死亡情况。其中, 附着是指幼体伸出足部爬行或分泌足丝附着; 变态是指幼体面盘萎缩消失, 具明显鳃丝, 不游动且能直立并开壳滤水, 长出次生壳; 幼体鳃纤毛不摆动, 有组织流出壳外则判定为死亡(图2)。
图2 沙筛贝足面盘幼体附着、变态和死亡的形态

a. 附着; b. 变态(俯视); c. 变态(侧视); d. 死亡

Fig. 2 The morphology of settlement, metamorphosis and death of larvae of M. sallei. (a) Settlement; (b) metamorphosis (vertical); (c) metamorphosis (lateral); (d) death

1.2.3 数据处理

各环境因子下沙筛贝幼体的附着率、变态率和死亡率分别为附着、变态和死亡数量与实验幼体总数的百分比。以Office Excel 2010处理数据、作图, 用SPSS 17.0统计软件中的单因素方差分析(P<0.05, one way ANOVA)Tukey检验比较不同实验组间的显著性差异。

2 结果与分析

2.1 温度对沙筛贝幼体附着变态的影响

如图3所示, 实验24h时, 温度过低(10℃)或过高(40℃)均能引起幼体死亡, 死亡率分别为11.1%和100%, 显著高于其他温度组。10℃和15℃下, 幼体的附着率分别为7.8%和11.1%, 变态率均为0%, 显著低于其他温度组, 表明低温对沙筛贝幼体的附着和变态具显著抑制作用。48h时, 沙筛贝幼体在较高温度下(20、25、30、35℃)的附着率(>40%)显著高于低温组(10℃和15℃), 而幼体变态率随温度升高呈逐渐升高趋势, 25~35℃时幼体变态率(>16%)显著高于10~20℃(<6%), 35℃达到最高为33.3%, 显著高于其他温度组。72h时, 20、25、30、35℃温度下, 幼体的附着率分别为55.6%、72.2%、71.1%和72.2%, 显著高于低温(10、15℃)组的15.6%和18.9%。20℃下幼体的附着率虽然较高, 但变态率只有8.9%, 显著低于25、30、35℃温度组的47.8%、54.4%、56.7%。另外, 较低温度(10℃)下, 幼体的死亡率为23.3%, 显著高于其他温度组(40℃除外)。结果表明, 沙筛贝幼体的附着变态在低温下被显著抑制, 而高温(40℃)则会引起幼体的全部死亡, 沙筛贝幼体可在25~35℃下正常附着变态。
图3 沙筛贝幼体在不同温度下附着(a)、变态(b)及死亡(c)的情况

不同实验组别间的显著性差异用不同字母表示(P<0.05, 下同)

Fig. 3 Larval settlement (a), metamorphosis (b) and death (c) of M. sallei at different temperatures. Significant differences among treatments are indicated by different letters (P<0.05, the same hereinafter)

2.2 盐度对沙筛贝幼体附着变态的影响

盐度对沙筛贝幼体附着变态的影响实验结果如图4所示。实验24h时, 盐度10‰~25‰实验组的幼体附着率显著高于0‰、45‰、50‰盐度组, 幼体变态率在各盐度组中均低于5%。极低盐度实验组(盐度0‰)的幼体出现大量死亡, 死亡率高达72.2%。48h时, 盐度5‰~25‰实验组的幼体附着率和变态率显著高于极低盐度组(盐度0‰)和高盐度组(盐度40‰、45‰、50‰)。极低盐度组(盐度0‰)的幼体死亡率达到91.1%, 高盐度组(盐度50‰)的幼体死亡率提升至10%。72h时, 盐度为15‰~30‰的实验组幼体附着率达60%以上, 幼体变态率达50%以上, 均显著高于其他盐度实验组。此时, 盐度0‰实验组幼体死亡率为96.7%, 盐度45‰和50‰实验组的幼体死亡率分别为14.4%和21.1%, 与盐度15‰外的其他实验组无显著差异。以上结果表明, 沙筛贝幼体附着变态的适宜盐度范围较大, 为15‰~30‰。
图4 沙筛贝幼体在不同盐度下附着(a)、变态(b)及死亡(c)的情况

Fig. 4 Larval settlement (a), metamorphosis (b) and death (c) of M. sallei at different salinities

2.3 光照对沙筛贝幼体附着变态的影响

光照对沙筛贝幼体附着变态的影响实验结果如图5和图6所示, 光照周期的不同(12L∶12D, 24L∶0D)对沙筛贝幼体附着变态的影响差异不大。实验24h后的结果表明, 随着光照强度增加, 幼体的附着率呈下降趋势, 光照强度为20000lx的实验组显著低于除1000lx之外的其他实验组, 不同光照强度对幼体变态率的影响无显著差异。
图5 沙筛贝幼体在不同光照强度下附着(a)、变态(b)及死亡(c)的情况(光照周期12L:12D)

Fig. 5 Larval settlement (a), metamorphosis (b) and death (c) of M. sallei at different light intensities (light cycles 12L:12D)

图6 沙筛贝幼体在不同光照强度下附着(a)、变态(b)及死亡(c)的情况(光照周期24L:0D)

Fig. 6 Larval settlement (a), metamorphosis (b) and death (c) of M. sallei at different light intensities (light cycles 24L:0D)

此外, 强光会造成幼体死亡率升高, 不同光照周期下, 20000lx实验组的幼体死亡率均达到了20%左右, 显著高于0~1000lx实验组。48h时, 幼体的附着和变态率变化趋势与24h时相似, 整体呈现随光照强度增加逐渐降低趋势。低光照强度实验组(≤2000lx)的幼体附着和变态率显著高于20000lx实验组, 两种光周期下, 20000lx实验组的幼体死亡率均达到了30%左右, 显著高于0~5000lx实验组。72h与24h和48h实验结果趋势一致, 高光照强度下(≥10000lx)的幼体附着率仍低于低光照强度(≤1000lx); 高光照强度实验组(≥10000lx)的幼体死亡率显著高于低光照强度实验组(≤2000lx)。结果表明, 光照强度在一定范围内(0~5000lx)对沙筛贝幼体附着变态和存活无显著影响, 但高光照强度(≥10000lx)会抑制沙筛贝幼体的附着变态, 并造成幼体的死亡。

2.4 溶解氧对沙筛贝幼体附着变态的影响

溶解氧对沙筛贝幼体附着变态的影响结果如图7所示, 当溶解氧≥3.2mg·L-1(饱和百分率S=40%)时, 各实验组的幼体附着率和变态率之间无显著差异, 均随时间推移逐渐增加, 实验72h时, 幼体附着率超过60%, 变态率超过35%, 幼体死亡率低于10%。而溶解氧≤1.6mg·L-1 (S=20%)时, 幼体附着变态受到显著抑制, 且随时间推移变化不大, 实验72h时, 幼体附着率(<20%)和变态率(<10%)显著低于相对高含氧量实验组, 而幼体死亡率则显著升高, 均超过了30%, 溶解氧饱和百分率S=5%的实验组死亡率高达82.2%, 均显著高于其他实验组。以上结果表明, 沙筛贝幼体适宜在溶解氧范围为3.2~8.0mg·L-1 (S=40%~100%)下附着变态, 低溶解氧(≤1.6mg·L-1, S=20%)会抑制沙筛贝幼体的附着变态, 并造成其死亡。
图7 沙筛贝幼体在不同溶解氧下附着(a)、变态(b)及死亡(c)的情况

Fig. 7 Larval settlement (a), metamorphosis (b) and death (c) of M. sallei at different dissolved oxygen levels

3 讨论

3.1 温度对沙筛贝幼体附着变态的影响

在海洋无脊椎动物幼体的发育过程中, 海水温度起到至关重要的作用, 适宜的海水温度能够促进幼体的发育, 缩短浮游期(van Der Gaag et al, 2017; 蒋湘 等, 2021)。Feng等(2010)发现, 海水温度对冠瘤海鞘(Styela canopus)幼体的附着变态影响显著, 在12~30℃范围内, 幼体的附着率随温度升高显著降低。孔宁(2016)研究发现, 水温对于皱纹盘鲍(Haliotis discus hannai)幼体的影响极为显著, 在14~28℃内, 幼体变态率随水温的升高呈现先升高后降低的趋势, 24℃时变态率达到最大值。Astudillo等(2017)对沙筛贝幼体进行了三种不同温度的附着实验测试, 发现在14℃时, 幼体的附着数量显著低于22℃和30℃时的附着数量。本研究建立温度梯度进行实验, 结果显示, 沙筛贝幼体的附着和变态在低温(10、15℃)下受到显著抑制, 而高温(40℃)不仅抑制幼体的附着和变态, 甚至会造成幼体全部死亡, 沙筛贝幼体可在25~35℃下正常附着和变态, 该水温范围相对较高, 可能是因为沙筛贝主要分布在热带和亚热带海域, 具有较强的高温适应能力。

3.2 盐度对沙筛贝幼体附着变态的影响

盐度是另一个重要的环境因子, 与温度共同决定海洋无脊椎动物的地理分布, 而且对海洋无脊椎动物的存活及生长发育具有重要影响(孔宁, 2016; 牛东红 等, 2024)。Sa-Nguansil等(2020)的研究表明成体沙筛贝的耐盐范围广泛, 在0~40‰盐度范围内均能存活, 但40‰盐度条件下大多数个体死亡仅部分存活。然而大量的研究显示, 虽然沙筛贝的耐盐范围广泛, 但是更喜欢低盐环境(≤24‰)(Morton et al, 2015; Astudillo et al, 2017; Queiroz et al, 2020)。本研究结果显示, 沙筛贝幼体在盐度为15‰~30‰范围内均能正常附着和变态, 最适盐度为15‰。本次研究对象沙筛贝的采集地点厦门马銮湾的海水盐度年变化为14.9‰~26.4‰(蔡立哲 等, 2006), 在沙筛贝繁殖高峰期(5—6月), 雨水增多, 海水盐度通常会降至10‰~20‰, 正是适宜沙筛贝幼体附着和变态的盐度范围, 这可能是马銮湾水域沙筛贝大量增殖的原因之一。有学者认为, 因为沙筛贝自然生长于低盐度水域, 所以盐度的骤然升高可能是其无法从近海低盐度水域迁移至外海高盐度水域的主要原因(Wells, 2019)。由此可见, 盐度对于沙筛贝群体的分布影响显著, 结果可为后期沙筛贝的防治提供重要理论参考。

3.3 光照对沙筛贝幼体附着变态的影响

对于海洋无脊椎动物而言, 光照能够影响幼体的趋光性, 从而影响海洋无脊椎动物的种群空间分布(Doropoulos et al, 2020; Loureiro et al, 2021)。Whalan(2023)通过研究发现光照对于角骨海绵(Coscinoderma mathewsi)、胄甲海绵(Luffariella variabilis)和羊海绵(Ircinia microconnulosa)的幼体附着有显著影响, 它们在黑暗环境中的平均附着率分别为(76.82±3.51)%、(58.80±5.27)%和(55.00±4.17)%, 显著高于它们在光照环境中的平均附着率; 而蜂海绵(Haliclona sp.)在黑暗和光照环境中的平均附着率一致。Feng等(2010)的研究表明, 对于冠瘤海鞘幼体而言, 自然光周期(12L:12D)下不同光强对其附着变态影响无显著差异, 但在光周期(24L:0D)下, 幼体附着和变态率随着光强增加而逐渐降低, 这可能是由于海鞘幼体偏向于在黑暗条件下附着和变态。而本研究结果发现, 沙筛贝幼体附着和变态受光照周期的影响较小, 可能是由于沙筛贝幼体在适宜的光照强度下, 黑暗和光照中均能进行附着变态。沙筛贝幼体适宜在低光照强度(0~5000lx)下附着和变态, 高光照强度(≥10000lx)会抑制沙筛贝幼体的附着变态, 甚至引起幼体的死亡。在自然环境中, 强光照水域所存在的紫外线强、藻类暴发、易被捕食者发现等问题, 可能会使得沙筛贝幼体的死亡率较高, 不易存活, 因此在长期进化过程中, 沙筛贝幼体更倾向于在光强较弱的环境条件下附着、变态。

3.4 溶解氧对沙筛贝幼体附着变态的影响

在沿海生态系统中, 水体中氧含量也是一种重要的环境因子, 由于营养负荷和富营养化条件, 缺氧在全球范围内发生的频率和严重程度都在增加(Wei et al, 2021)。在浅海环境中, 白天的光合作用和夜间的呼吸作用可能导致氧气供应极不稳定, 并且这种周期性缺氧情况在夏季可能会加剧(Gurr et al, 2018)。张兴志 等(2024)通过研究表明, 低氧能够显著影响香港牡蛎(Crassostrea hongkongensis)的抗氧化能力和与能量代谢相关的酶活性。在本研究中, 当溶解氧含量为3.2~8.0mg·L-1时沙筛贝幼体可正常附着变态, 而幼体的附着变态在较低溶解氧下(≤1.6mg·L-1)才受到显著抑制, 且死亡率显著升高, 表明沙筛贝幼体耐低氧能力较强。在自然海域中, 沙筛贝通常堆叠附着, 导致单位水体中生物量较大, 而内层沙筛贝所处的海水环境中溶解氧可能更低, 表明沙筛贝耐低氧能力可能较强, 本研究结果也证实了该观点。

4 结论

本文通过研究几种主要的环境因子(温度、盐度、光照和溶解氧)对沙筛贝幼体附着变态的影响, 发现沙筛贝幼体可在较高温度(25~35℃)、较广盐度(15‰~30‰)和低光照(0~5000lx)条件下附着变态, 且其幼体具备较强的耐低氧能力(溶解氧饱和百分率40%~100%, 3.2~8.0mg·L-1)。本研究揭示了沙筛贝幼体附着变态的适宜环境条件, 对气候变化条件下沙筛贝在我国沿海的可能分布扩散区域预测具有重要意义, 有助于采取预防措施以防止其进一步扩张至我国其他海域, 对当地水产养殖业造成危害。

References

Publishing order | Descend order by publishing year | Descend order by cited within
[1]
蔡立哲, 高阳, 刘炜明, 等, 2006. 外来物种沙筛贝对厦门马銮湾大型底栖动物的影响[J]. 海洋学报, 28(5): 83-89.

CAI LIZHE, GAO YANG, LIU WEIMING, et al, 2006. Effect of exotic species Mytilopsis sallei on macrozoobenthos in the Maluan Bay, Xiamen in China[J]. Haiyang Xuebao, 28(5): 83-89 (in Chinese with English abstract).

[2]
蒋湘, 魏亦彤, 许乐乐, 等, 2021. 光照强度、温度及海水类型对卤虫(Artemia saline)卵孵化率和幼体存活率的影响[J]. 水产科技情报, 48(4): 197-202.

JIANG XIANG, WEI YITONG, XU LELE, et al, 2021. Effects of light intensity, temperature and seawater type on hatchability and survival rate of Artemia saline[J]. Fisheries Science & Technology Information, 48(4): 197-202 (in Chinese with English abstract).

[3]
孔宁, 2016. 温度、盐度对皱纹盘鲍“97”选群生长发育的影响[D]. 青岛: 中国科学院研究生院(海洋研究所).

KONG NING, 2016. Effects of temperature and salinity on growth and development of “97” selective breeding population of Haliotis discus hannai Ino[D]. Qingdao: Institute of Oceanology, University of Chinese Academy of Sciences (in Chinese with English abstract).

[4]
马鸿梅, 秦传新, 王兴强, 等, 2020. 应用Maxent建立沙筛贝潜在生境模型[J]. 应用生态学报, 31(4): 1357-1364.

DOI

MA HONGMEI, QIN CHUANXIN, WANG XINGQIANG, et al, 2020. Establishing potential habitats of Mytilopsis sallei with Maxent niche model[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 31(4): 1357-1364 (in Chinese with English abstract).

[5]
牛东红, 王宏蕾, 李家乐, 2024. 海洋贝类对盐度胁迫适应机制的研究进展[J]. 水产学报, 48(4): 049104.

NIU DONGHONG, WANG HONGLEI, LI JIALE, 2024. Research progress on adaptation mechanism of marine shellfish to salinity stress[J]. Journal of Fisheries of China, 48(4): 049104 (in Chinese with English abstract).

[6]
王建军, 黄宗国, 郑成兴, 等, 1999. 厦门和东山外来物种沙筛贝的种群动态和结构[J]. 台湾海峡, 18(4): 372-377.

WANG JIANJUN, HUANG ZONGGUO, ZHENG CHENGXING, et al, 1999. Population dynamics and structure of alien species Mytilopsis sallei in Fujian, China[J]. Journal of Oceanography in Taiwan Strait, 18(4): 372-377 (in Chinese with English abstract).

[7]
张兴志, 何苹萍, 官俊良, 等, 2024. 低氧胁迫及复氧对香港牡蛎抗氧化和能量代谢相关酶活性的影响[J]. 广东海洋大学学报, 44(2): 32-38.

ZHANG XINGZHI, HE PINGPING, GUAN JUNLIANG, et al, 2024. Effects of Hypoxia-reoxygenation on antioxidant capacity and enzyme activities related to energy metabolism of Crassostrea hongkongensis[J]. Journal of Guangdong Ocean University, 44(2): 32-38 (in Chinese with English abstract).

[8]
张悦, 许道艳, 廖国祥, 等, 2024. 我国海洋外来生物入侵现状、监管问题及建议[J]. 海洋开发与管理, 41(1): 37-44.

ZHANG YUE, XU DAOYAN, LIAO GUOXIANG, et al, 2024. The present situation, supervision problems and suggestions of Marine alien biological invasion in China[J]. Ocean Development and Management, 41(1): 37-44 (in Chinese with English abstract).

[9]
ASTUDILLO J C, BONEBRAKE T C, LEUNG K M Y, 2017. The recently introduced bivalve Xenostrobus securis has higher thermal and salinity tolerance than the native Brachidontes variabilis and established Mytilopsis sallei[J]. Marine Pollution Bulletin, 118(1-2): 229-236.

[10]
CAI LIZHE, HWANG J S, DAHMS H U, et al, 2014. Effect of the invasive bivalve Mytilopsis sallei on the macrofaunal fouling community and the environment of Yundang Lagoon, Xiamen, China[J]. Hydrobiologia, 741(1): 101-111.

[11]
DONG HAO, LIU JIE, ZHAO LINLIN, et al, 2023. Applying an ensemble of small models in predicting habitat suitability of invasive M. sallei along the southern coast of China[J]. Marine Pollution Bulletin, 197: 115777.

[12]
DOROPOULOS C, THOMSON D P, TRAPON M, et al, 2020. Depth gradients drive changes in early successional community composition and associated coral larvae settlement interactions[J]. Marine Biology, 167(5): 59.

[13]
FENG DANQING, KE CAIHUAN, LU CHANGYI, et al, 2010. The influence of temperature and light on larval pre-settlement metamorphosis: a study of the effects of environmental factors on pre-settlement metamorphosis of the solitary ascidian Styela canopus[J]. Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, 43(1): 11-24.

[14]
GURR S J, GOLESKI J, LIMA F P, et al, 2018. Cardiac responses of the bay scallop Argopecten irradians to diel-cycling hypoxia[J]. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 500: 18-29.

[15]
HASSELL K L, COUTIN P C, NUGEGODA D, 2009. A novel approach to controlling dissolved oxygen levels in laboratory experiments[J]. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 371(2): 147-154.

[16]
HE JIAN, QI JIANFEI, FENG DANQING, et al, 2016. Embryonic and larval development of the invasive biofouler Mytilopsis sallei (Récluz, 1849) (Bivalvia: Dreissenidae)[J]. Journal of Molluscan Studies, 82(1): 23-30.

[17]
LIM C S, TAY T S, TAN K S, et al, 2020. Removal of larvae of two marine invasive bivalves, Mytilopsis sallei (Récluz, 1849) and Mytella strigata (Hanley, 1843), by water treatment processes[J]. Marine Pollution Bulletin, 155: 111154.

[18]
LOUREIRO T G, PETERS K, ROBINSON T B, 2021. Light, shade and predation: who wins and who loses in sessile fouling communities?[J]. Marine Biodiversity, 51(6): 94.

[19]
MORTON B, LEUNG K F, 2015. Introduction of the alien Xenostrobus securis (Bivalvia: Mytilidae) into Hong Kong, China: interactions with and impacts upon native species and the earlier introduced Mytilopsis sallei (Bivalvia: Dreissenidae)[J]. Marine Pollution Bulletin, 92(1-2): 134-142.

[20]
MUHTADI A, LEIDONALD R, RAHMAWATI A, et al, 2024. New record and population dynamics of the invasive bivalve Mytilopsis sallei (Récluz, 1849) in a tropical coastal lake from Indonesia[J]. BioInvasions Records, 13(2): 453-467.

[21]
NADA M A L, BAQUIRAN J I P, CABAITAN P C, et al, 2020. Behavior and development of larvae in the sponge Haliclona amboinensis[J]. Invertebrate Biology, 139(3): e12296.

[22]
NOZAWA Y, Harrison P L, 2007. Effects of elevated temperature on larval settlement and post-settlement survival in scleractinian corals, Acropora solitaryensis and Favites chinensis[J]. Marine Biology, 152(5): 1181-1185.

[23]
PYŠEK P, HULME P E, SIMBERLOFF D, et al, 2020. Scientists' warning on invasive alien species[J]. Biological Reviews, 95(6): 1511-1534.

[24]
QUEIROZ R N M, DA SILVA P M, DESOUZA A M, et al, 2020. Effects of environmental factors on the distribution of the exotic species Mytilopsis sallei (Récluz, 1849) (Bivalvia: Dreissenidae) on the Northeast coast of Brazil[J]. Journal of Sea Research, 165: 101954.

[25]
RAO XIAOZHEN, LIN GANG, 2020. Effects of age, salinity and temperature on the metamorphosis and survival of Capitulum mitella cyprids (Cirripedia: Thoracica: Scalpellomorpha)[J]. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 100(1): 55-62.

[26]
SA-NGUANSIL S, WANGKULANGKUL K, 2020. Salinity tolerance in different life history stages of an invasive false mussel Mytilopsis sallei Recluz, 1849: implications for its restricted distribution[J]. Molluscan Research, 40(3): 214-222.

[27]
VAN DER GAAG M, VAN DER VELDE G, LEUVEN R S E W, 2017. Settlement, seasonal size distribution, and growth of the invasive bivalve Mytilopsis leucophaeata (Conrad, 1831) (Dreissenidae) in relation to environmental factors[J]. Journal of Shellfish Research, 36(2): 417-426.

[28]
WEI QINSHENG, XUE LIANG, YAO QINGZHEN, et al, 2021. Oxygen decline in a temperate marginal sea: contribution of warming and eutrophication[J]. Science of the Total Environment, 757: 143227.

[29]
WELLS F E, 2019. Environmental emergency: why did the false mussel Mytilopsis sallei not invade Darwin Harbour, Australia?[J]. Malacologia, 62(2): 247-256.

[30]
WHALAN S, 2023. The role of photobehaviour in sponge larval dispersal and settlement[J]. PLoS One, 18(7): e0287989.

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